Feline Hämobartonellose – eine krankheit mit unklarer übertragungsweise

Partager / Share

FELINE HÄMOBARTONELLOSE EINE KRANKHEIT MIT UNKLARER ÜBERTRAGUNGSWEISE

WAS IST DIE FELINE HÄMOBARTONELLOSE?

Die feline Hämobartonellose (oder feline hämotrope Mykoplasmose) ist eine Infektionskrankheit, die durch Bakterien der Gattung Mykoplasma (Mycoplasma haemofelis und Candidatus Mycoplasma haemominutum) verursacht wird, die in den roten Blutkörperchen parasitieren und zu einer schweren hämolytischen Anämie führen können.
Es ist zum jetzigen Zeitpunkt schwierig, den Übertragungsweg der Krankheit genau zu definieren. Es könnte jedoch sein, dass Flöhe und Zecken ebenso wie Bisse¹ oder Bluttransfusionen¹ als Übertragungsvektoren in Frage kommen. Bestimmte Faktoren scheinen das Risiko einer Mykoplasma-Infektion zu erhöhen oder die Krankheit zu verschlimmern, wie z. B. Geschlecht, Alter, Bissverletzungen, Infektion mit einem Retrovirus (FeLV- oder FIV-Seropositivität), fehlender Stammbaum oder Zugang zu Freigehegen¹.


Einige Katzen mit Hämobartonellose können asymptomatisch sein oder unspezifische Anzeichen (Lethargie, Anorexie, Dehydrierung) aufweisen, während bei anderen die Krankheit eine akute Hämolyse induzieren und so bis zum Tod führen kann¹.
Hunde können auch von der Hämobartonellose betroffen sein, die hauptsächlich durch Mycoplasma haemocanis oder Candidatus Mycoplasma haematoparvum verursacht wird. Der Übertragungsweg ist ebenso unklar wie bei Katzen.

GEROGRAFISCHE VERTEILUNG UND RISIKO FÜR DIE MENSCHLICHE GESUNDHEIT

Die feline Hämobartonellose wurde weltweit nachgewiesen, allerdings variiert ihre Prävalenz von Region zu Region¹.
Bisher wurde das zoonotische Potenzial der verursachenden Bakterien vernachlässigt. Einige Daten deuten jedoch auf eine mögliche Übertragung zwischen verschiedenen Spezies hin.

DIAGNOSTIK

Die durch Mycoplasma haemofelis oder Candidatus M. haemominutum verursachte Hämobartonellose bei Katzen kann asymptomatisch verlaufen oder zu einer schweren hämolytischen Anämie führen. Die Diagnose beruht auf verschiedenen Ansätzen – zytologisch, serologisch oder molekular -, deren Empfindlichkeit je nach verwendeter Methode und Stadium der Infektion variiert.
Eine Diagnose kann durch die Entnahme eines Blutausstrichs gestellt werden. Die mikroskopische Untersuchung eines Blutausstrichs kann jedoch schwierig zu interpretieren sein, da die Bakterien, die die Hämobartonellose verursachen, leicht mit anderen Strukturen (Howell-Joly-Körperchen) oder Färbungsartefakten verwechselt werden können.
Andere Untersuchungen wie Blut- und Urintests oder die Infektionsserologie können unspezifisch sein, aber die Diagnose unterstützen.
Die molekulare Diagnostik durch DNA-Amplifikation ist nach wie vor das Verfahren der Wahl für den direkten Nachweis des Bakteriums im Blut¹. Die LAMP-Technik ermöglicht innerhalb von 30 Minuten insbesondere die Identifizierung der DNA von Mycoplasma haemofelis und Candidatus Mycoplasma haemominutum bei Katzen, sowie der DNA von Mycoplasma haemocanis und Candidatus Mycoplasma haematoparvum bei Hunden.

BEHANDLUNG

Die Behandlung ist bei symptomatischen Katzen angezeigt und beruht auf der Verabreichung eines Antibiotikums. Bisher ist es unwahrscheinlich, dass die Antibiotikabehandlung das Bakterium vollständig eliminiert, daher können infizierte Katzen monate- oder jahrelang asymptomatische Träger bleiben.

Eine Reaktivierung der klinischen Krankheit scheint jedoch selten zu sein¹. Neben der Antibiotikabehandlung können je nach Symptomen Transfusionen, Kortikosteroide und verschiedene adjuvante Medikamente eingesetzt werden. Die Behandlung in Verbindung mit einer wirksamen Prävention des Flohbefalls bleibt notwendig.

VORTEILE DER ENALEES TESTS

TECHNOLOGIE

Unsere Tests verwenden eine isotherme PCR-Technologie:
Die LAMP-Technologie ermöglicht
den Nachweis der DNA des Krankheitserregers aus einer Blutprobe.

SENSIBILITÄT

Das Astéria® Hämobart Kit hat eine mit der PCR vergleichbare Empfindlichkeit. Es weist die Spezies Mycoplasma haemofelis und Candidatus Mycoplasma haemominutum nach, die bei Katzen die Krankheit verursachen.

ZEITERSPARNIS

Die Ergebnisse werden innerhalb von 30 Minuten in der Praxis/Klinik erzielt.

TIERWOHL

Die Katze kann noch am selben Tag behandelt werden. Der Besitzer wird sofort über den Zustand seines Tieres informiert.

COMPARATIF DES DIFFÉRENTES MÉTHODES DE DIAGNOSTIC

Bibliographie

1 Willi, B., Boretti, F.S., Meli, M.L., Bernasconi, M.V., Casati, S., Hegglin, D., Puorger, M., Neimark, H., Cattori, V., Wengi, N., Reusch, C.E., Lutz, H., Hofmann-Lehmann, R., 2007a. Real-time PCR investigation of potential vectors, reservoirs, and shedding patterns of feline hemotropic mycoplasmas. Appl. Environ. Microbiol. 73, 3798–3802.  https://doi.org/10.1128/AEM.02977-06

2 Museux, K., Boretti, F.S., Willi, B., Riond, B., Hoelzle, K., Hoelzle, L.E., Wittenbrink, M.M., Tasker, S., Wengi, N., Reusch, C.E., Lutz, H., Hofmann-Lehmann, R., 2009. In vivo transmission studies of “Candidatus Mycoplasma turicensis” in the domestic cat. Vet. Res. 40, 45. https://doi.org/10.1051/vetres/2009028

3 Gary, A.T., Richmond, H.L., Tasker, S., Hackett, T.B., Lappin, M.R., 2006. Survival of Mycoplasma haemofelis and “Candidatus Mycoplasma haemominutum” in blood of cats used for transfusions. J. Feline Med. Surg. 8, 321–326. https://doi.org/10.1016/j.jfms.2006.04.005

4 Willi, B., Boretti, F.S., Baumgartner, C., Tasker, S., Wenger, B., Cattori, V., Meli, M.L., Reusch, C.E., Lutz, H., Hofmann-Lehmann, R., 2006. Prevalence, risk factor analysis, and follow-up of infections caused by three feline hemoplasma species in cats in Switzerland. J. Clin. Microbiol. 44, 961–969. https://doi.org/10.1128/JCM.44.3.961-969.2006

5 Barker, E.N., 2019. Update on Feline Hemoplasmosis. Vet. Clin. North Am. Small Anim. Pract. 49, 733–743. https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2019.02.009

6 Tasker, S., Binns, S.H., Day, M.J., Gruffydd-Jones, T.J., Harbour, D.A., Helps, C.R., Jensen, W.A., Olver, C.S., Lappin, M.R., 2003. Use of a PCR assay to assess the prevalence and risk factors for Mycoplasma haemofelis and “Candidatus Mycoplasma haemominutum” in cats in the United Kingdom. Vet. Rec. 152, 193–198. https://doi.org/10.1136/vr.152.7.193

7 Willi, B., Filoni, C., Catão-Dias, J.L., Cattori, V., Meli, M.L., Vargas, A., Martínez, F., Roelke, M.E., Ryser-Degiorgis, M.-P., Leutenegger, C.M., Lutz, H., Hofmann-Lehmann, R., 2007b. Worldwide occurrence of feline hemoplasma infections in wild felid species. J. Clin. Microbiol. 45, 1159–1166. https://doi.org/10.1128/JCM.02005-06

8 Peters, I.R., Helps, C.R., Willi, B., Hofmann-Lehmann, R., Tasker, S., 2008. The prevalence of three species of feline haemoplasmas in samples submitted to a diagnostics service as determined by three novel real-time duplex PCR assays. Vet. Microbiol. 126, 142–150. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2007.06.017

9 Foley, J.E., Harrus, S., Poland, A., Chomel, B., Pedersen, N.C., 1998. Molecular, clinical, and pathologic comparison of two distinct strains of Haemobartonella felis in domestic cats. Am. J. Vet. Res. 59, 1581–1588.

10 Willi, B., Novacco, M., Meli, M., Wolf-Jäckel, G., Boretti, F., Wengi, N., Lutz, H., Hofmann-Lehmann, R., 2010. Haemotropic mycoplasmas of cats and dogs: transmission, diagnosis, prevalence and importance in Europe. Schweiz. Arch. Tierheilkd. 152, 237–244.

11 Sykes, J.E., Bailiff, N.L., Ball, L.M., Foreman, O., George, J.W., Fry, M.M., 2004. Identification of a novel hemotropic mycoplasma in a splenectomized dog with hemic neoplasia. J. Am. Vet. Med. Assoc. 224, 1946–1951, 1930–1931. https://doi.org/10.2460/javma.2004.224.1946

12 Willi, B., Boretti, F.S., Cattori, V., Tasker, S., Meli, M.L., Reusch, C., Lutz, H., Hofmann-Lehmann, R., 2005. Identification, molecular characterization, and experimental transmission of a new hemoplasma isolate from a cat with hemolytic anemia in Switzerland. J. Clin. Microbiol. 43, 2581–2585. https://doi.org/10.1128/JCM.43.6.2581-2585.2005

13 Zhuang, Q.J., Zhang, H.J., Lin, R.Q., Sun, M.F., Liang, X.J., Qin, X.W., Pu, W.J., Zhu, X.Q., 2009. The occurrence of the feline “Candidatus Mycoplasma haemominutum” in dog in China confirmed by sequence-based analysis of ribosomal DNA. Trop. Anim. Health Prod. 41, 689–692. https://doi.org/10.1007/s11250-008-9242-2

14 Yuan, C.L., Liang, A.B., Yao, C.B., Yang, Z.B., Zhu, J.G., Cui, L., Yu, F., Zhu, N.Y., Yang, X.W., Hua, X.G., 2009. Prevalence of Mycoplasma suis (Eperythrozoon suis) infection in swine and swine-farm workers in Shanghai, China. Am. J. Vet. Res. 70, 890–894. https://doi.org/10.2460/ajvr.70.7.890

15 Dos Santos, A.P., dos Santos, R.P., Biondo, A.W., Dora, J.M., Goldani, L.Z., de Oliveira, S.T., de Sá Guimarães, A.M., Timenetsky, J., de Morais, H.A., González, F.H.D., Messick, J.B., 2008. Hemoplasma infection in HIV-positive patient, Brazil. Emerg. Infect. Dis. 14, 1922–1924. https://doi.org/10.3201/eid1412.080964

 

Main Menu x